各位老铁们，大家好，今天由我来为大家分享蒸发的实验步骤，以及冷知识实验室叠花的相关问题知识，希望对大家有所帮助。如果可以帮助到大家，还望关注收藏下本站，您的支持是我们最大的动力，谢谢大家了哈，下面我们开始吧！
本文目录
蒸发的实验步骤
蒸发步骤（以粗盐提纯为例）
第一步称量：用托盘天平称量一定质量的粗盐
第二步溶将称量好的粗盐放入干燥的烧杯中,加水溶解,加一点溶一点,并用玻璃棒搅拌
第三步过滤：将滤纸折成四折,撑开,放在漏斗中,一边三折,一边一折,滤纸边缘一定要低于漏斗边缘,将玻璃棒抵在三层的滤纸边缘,将烧杯嘴靠在玻璃棒上,慢慢倒液体,记住液体高度不要超过滤纸边缘（注意：漏斗口靠在烧杯壁上）
第四步蒸发：将滤液倒入蒸发皿中,点燃酒精灯,等到液体略微沸腾时,边加热边用玻璃棒搅拌,防止液体飞溅,等到蒸发皿中有较多固体析出时,停止加热
注意事项
蒸发
1.蒸发皿中液体的量不得超过容积的2/3.
2.蒸发过程中必须用玻璃棒不断搅拌,以防止局部温度过高而使液体飞溅.
3.当加热至(大量)固体出现时,应停止加热利用余热蒸干.
4.不能把热的蒸发皿直接放在实验台上,应垫上石棉网.
5.坩埚钳用于夹持蒸发皿.
实验室遇到台风天气应急演练方案
一、处置方法
1.熟悉岗位工作，紧急停止作业程序，台风来前关好门窗，断开设备电源，断开电脑网线。
2.台风来前检查各下水口是否通畅，有无被物品堵塞，如有需移开物品，台风过后检查各排水口是否通畅；如实验室在建筑物顶层，台风来前检查屋顶是否漏水或有积水，如有漏水需及时修补，积水及时清除，同时清除顶层的杂物，加固招牌等结构。
3.实验室外部堆放的物品及时转移至库房，如无法转移确保堆放不超过2米，叠放不超过2层。
实验室洗涤沉淀的步骤
洗涤沉淀物的步骤：
1、安装实验装置，将滤纸折叠在漏斗中。
2.将洗涤后的沉淀物放在漏斗中的滤纸上。
3.用玻璃棒排水，注入蒸馏水，直到它没有沉淀，然后等待液体从漏斗底部流出。
4.重复步骤3两到三次。
5.洗涤后将沉淀物倒在干燥的滤纸上，用玻璃棒扫去残留的沉淀物。
6.吸收水分。
沉淀的洗涤是为了洗去沉淀表面吸附的杂质和沉淀中混合的母液。在洗涤过程中选择合适的洗涤液可以减少沉淀的溶解损失，避免胶体的形成。
谁知道原位杂交怎么做
原位杂交是指将特定标记的已知顺序核酸为探针与细胞或组织切片中核酸进行杂交，从而对特定核酸顺序进行精确定量定位的过程。原位杂交可以在细胞标本或组织标本上进行。
另有荧光原位杂交。
中文名：原位杂交
外文名：insituhybridization
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基本定义
原位杂交（insituhybridization）
将标记的核酸探针与细胞或组织中的核酸进行杂交，称为原位杂交。
使用DNA或者RNA探针来检测与其互补的另一条链在细菌或其他真核细胞中的位置。
RNA原位核酸杂交又称RNA原位杂交组织化学或RNA原位杂交。该技术是指运用cRNA或寡核苷酸等探针检测细胞和组织内RNA表达的一种原位杂交技术。其基本原理是：在细胞或组织结构保持不变的条件下，用标记的已知的RNA核苷酸片段，按核酸杂交中碱基配对原则，与待测细胞或组织中相应的基因片段相结合（杂交），所形成的杂交体(Hybrids）经显色反应后在光学显微镜或电子显微镜下观察其细胞内相应的mRNA、rRNA和tRNA分子。RNA原位杂交技术经不断改进，其应用的领域已远超出DNA原位杂交技术。尤其在基因分析和诊断方面能作定性、定位和定量分析，已成为最有效的分子病理学技术，同时在分析低丰度和罕见的mRNA表达方面已展示了分子生物学的一重要方向。
FISH是原位杂交技术大家族中的一员，因其所用探针被荧光物质标记（间接或直接）而得名，该方法在80年代末被发明，现已从实验室逐步进入临床诊断领域。基本原理是荧光标记的核酸探针在变性后与已变性的靶核酸在退火温度下复性；通过荧光显微镜观察荧光信号可在不改变被分析对象（即维持其原位）的前提下对靶核酸进行分析。DNA荧光标记探针是其中最常用的一类核酸探针。利用此探针可对组织、细胞或染色体中的DNA进行染色体及基因水平的分析。荧光标记探针不对环境构成污染，灵敏度能得到保障，可进行多色观察分析，因而可同时使用多个探针，缩短因单个探针分开使用导致的周期过程和技术障碍。
例子
以菌落原位杂交为例：
对分散在若干个琼脂平板上的少数菌落（100-200）进行克隆筛选时，可采用该方法。将这些菌落归并到一个琼脂主平板以及已置于第二个琼脂平板表面的一张硝酸纤维素滤膜上。经培养一段时间后，对菌落进行原位裂解。主平板应贮存于4℃直至得到筛选结果。
将少数菌落转移到硝酸纤维素滤膜上
（1）在含有选择性抗生素的琼脂平板上放一张硝酸纤维素滤膜。
（2）用无菌牙签将各个菌落先转移至滤膜上，再转移至含有选择性抗生素但未放滤膜的琼脂主平板上。应按一定的格子进行划线接种（或打点）。每菌落应分别划线于两个平板的相同位置上。最后，在滤膜和主平板上同时划一个含有非重组质粒（如pBR322）的菌落。
（3）倒置平板，于37℃培养至划线的细菌菌落生长到0.5-1.0mm的宽度。
（4）用已装防水黑色绘图墨水的注射器针头穿透滤膜直至琼脂，在3个以上的不对称位置作标记。在主平板大致相同的位置上也作上标记。
（5）用Parafilm膜封好主平板，倒置贮放于4℃，直至获得杂交反应的结果。
（6）裂解细菌，按本段下面所述方法，使释放的DNA结合于硝酸纤维素滤膜。
菌落的裂解及DNA结合于硝酸纤维素滤膜
（1）在一张保鲜膜上制作一个装有0.5mol/LNaOH的小洼（0.75ml），使菌落面朝上，将滤膜放到小洼上，展平保鲜膜，使滤膜均匀湿润，让滤膜留于原处2-3分钟。
（2）用干纸巾从滤膜的下方吸干滤膜，用一张新的保鲜膜和新配制的0.5mol/LNaOH重复步骤（1）。
（3）吸干滤膜，将滤膜转移到新的带有1mol/LTris·Cl(pH7.4）的保鲜膜洼上。5分钟后吸干滤膜，再重复一次该步骤。
（4）吸干滤膜，把它转移到有1.5mol/LNaCl、0.5mol/LTris·Cl(pH7.4）的保鲜膜小洼上5分钟后吸干滤膜，转移到一张干的滤纸上，置于室温20-30分钟，使滤膜干燥。
（5）将滤膜夹在两张干的滤纸之间，在真空烤箱中于80℃干烤2小时，固定DNA。
（6）将固定在膜上的DNA与32P标记的RNA进行杂交。
3.杂交（1）盛有2×SSC的塑料盘同，将干烤的滤膜飘浮在液面上，彻底浸湿5分钟。
（2）将滤膜转到200ml预洗液的玻璃皿中。滤膜何叠在一起，放于溶液中。用保鲜膜盖住玻璃皿，放到位于培养箱内的旋转平台上。于50℃处理30分钟。在这一步及以后的所有步骤中，应缓缓摇动滤膜，防止它们粘在一起。
（3）用泡过预洗液的吸水棉纸轻轻地从膜表面拭去细菌碎片，以降低杂交背景而不影响阳性杂交信号的强度和清晰度。
（4）将滤膜转到盛有150ml预杂交液的玻璃中，在适宜温度（即在水溶液中杂交时用6
OK，本文到此结束，希望对大家有所帮助。